弗氏完全佐剂-博特龙公司(图)

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由于改良免0疫法只需二次基础免0疫而常规免0疫法则需要2倍于改良法的免0疫次数，所以改良法*原用量明显少于常规法，从而大大减少了实验成本的消耗。

此外，本实验通过对比两种免0疫方法的细胞融合率及*0体阳性率，发现改良免0疫法均显著高于常规免0疫法。

经过后续实验，证明改良法免0疫小鼠的杂交瘤细胞经二次克0隆化后，*0体阳性率可达检测孔的90％以上。杂交瘤细胞体外连续传代培养，并冻存复苏后仍具有分泌AFP—McAb的能力，并经染色体计数结果表明已成功获得一株AFP—McAb细胞株。这表明改良法与常规方法具有同样的有效性和稳定性。

1. 第21天按同样方式加强免0疫1针。备注：每次佐剂和*原现配现用。

2. 第35天采微量血进行ELISA测定，*0体滴度应在1:10000-1:10000000范围内，随后即可采全血或按常规方法进行*原冲击免0疫和脾细胞融合。

3. 若*0体滴度没有达到要求，可在第42天按同样方式加强免0疫1针。备注：通常情况下小鼠只需免0疫2针，而家兔往往需要免0疫3针。

4. 若免0疫3针，弗氏完全佐剂，可在第52-56天采微量血进行ELISA测定，*0体滴度应在1:10000-1:1000000范围内，随后即可采全血或按常规方法进行*原冲击免0疫和脾细胞融合。备注：佐剂免0疫效果有时也与*原特性有关，若免0疫3针后仍达不到要求，不建议进行更多针次免0疫。